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當前位置:首頁產(chǎn)品中心生化檢測試劑盒-微量法微量法生化試劑盒BC3145-100T/48S植酸酶活性檢測試劑盒 微量法

植酸酶活性檢測試劑盒 微量法
產(chǎn)品簡介:

植酸酶活性檢測試劑盒 微量法
有效期
6個月
儲存條件
2-8℃
單位

英文名稱
Phytase Activity Assay Kit
別名
植酸酶試劑盒 植酸酶測試盒
檢測方法
微量法 Spectrophotometer/Microplate Reader
規(guī)格
100T/48S
自備試劑
該試劑盒實驗過程中需自備試劑,詳情見網(wǎng)站說明書

產(chǎn)品型號:BC3145-100T/48S

更新時間:2024-04-19

廠商性質(zhì):生產(chǎn)廠家

訪 問 量 :829

服務(wù)熱線

010-50973130

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產(chǎn)品介紹

植酸酶活性檢測試劑盒

微量法

貨號:BC3145

規(guī)格:100T/48S

產(chǎn)品內(nèi)容:使用前請認真核對試劑體積與瓶內(nèi)體積是否一致,有疑問請及時聯(lián)系索萊寶工作人員。

試劑名稱

規(guī)格

保存條件

提取液

液體60mL×1

2-8℃保存

緩沖液

液體15mL×1

2-8℃保存

試劑一

粉劑×1

2-8℃保存

試劑二

粉劑×1

2-8℃保存

試劑三

粉劑×1

2-8℃保存

標準

液體1mL×1

2-8℃保存

溶液的配制:

1. 試劑一:臨用前加入到緩沖液中(可吸取緩沖液到試劑一瓶中反復沖洗),充分震蕩溶解,用不完的試劑2-8℃可保存4周。

2. 試劑二:臨用前加入3.15mL蒸餾水充分溶解,再將槍頭伸入液面下緩慢加入0.85mL濃硫酸,2-8℃可保存4周。

3. 試劑三:臨用前加入20mL蒸餾水充分溶解,2-8℃可保存4周。。

4. 工作液:臨用前根據(jù)測定數(shù)量將試劑二:試劑三=1mL5mL (40T)的比例混勻,配制后于2-8℃可保存3天。

5. 標準品:5μmol/mL無機磷標準液。

產(chǎn)品說明:

植酸酶(Phytase)又叫肌醇六磷酸酶,是一種蛋白質(zhì)和糖的結(jié)合酶,植酸酶可以分解植酸產(chǎn)生無機磷和肌醇,極大的提高生物對養(yǎng)分的利用率,天然植酸酶廣泛存在于植物、動物組織和微生物中,現(xiàn)多用微生物來合成植酸酶進行生產(chǎn)應(yīng)用,植酸酶在糧食生產(chǎn)、畜牧養(yǎng)殖領(lǐng)域具有廣泛的研究價值。

在一定的環(huán)境條件下,植酸酶可以分解植酸鈉(肌醇六磷酸十二鈉)產(chǎn)生無機磷和肌醇衍生物,在酸性條件下,無機磷和鉬酸銨顯色劑發(fā)生反應(yīng),產(chǎn)生藍色的鉬藍物質(zhì),其在700nm有特征吸收峰,通過測定無機磷的含量,可計算出植酸酶的活性。 

 

注意:實驗之前建議選擇2-3個預期差異大的樣本做預實驗。如果樣本吸光值不在測量范圍內(nèi)建議稀釋或者增加樣本量進行檢測。

需自備的儀器和用品:

 

可見分光光度計/酶標儀、低溫離心機、水浴鍋/恒溫培養(yǎng)箱、可調(diào)式移液器研缽/勻漿器/細胞超聲破碎儀、濃硫酸、微量玻璃比色皿/96孔板、冰和蒸餾水。

操作步驟:

一、樣本處理(可適當調(diào)整待測樣本量,具體比例可以參考文獻)

1. 組織:按照樣本質(zhì)量(g):提取液體積(mL)為1:5~10 的比例(建議稱取約0.1g組織,加入1mL提取液)加入提取液,冰浴勻漿;4000g 4℃離心10min(若仍然渾濁,可延長離心時間),取上清置冰上待測。

2. 細菌或細胞樣本:收集細菌或細胞到離心管內(nèi),離心后棄上清,按照細菌或細胞數(shù)量(104個):提取液體積(mL)為 500~1000:1 的比例(建議500萬細菌或細胞加入 1mL 提取液)加入提取液,超聲波破碎細菌或細胞(冰浴,功率200W,超聲 3s,間隔 7s,總時間3min),4000g 4℃離心10min,取上清置冰上待測。

3. 培養(yǎng)液或其他液體:直接檢測。若溶液渾濁則離心后取上清進行測定。

二、測定步驟

1、可見分光光度計/酶標儀預熱30min以上,調(diào)節(jié)波長至700nm,可見分光光度計用蒸餾水調(diào)零。

2、標準溶液的稀釋:將5μmol/mL無機磷標準液用蒸餾水稀釋至5310.50.250.1250.06250.03125μmol/mL備用。

3標準溶液稀釋可參考下表

序號

稀釋前濃度(μmol/mL

標準液體積(µL

蒸餾水體積(µL

稀釋后濃度(μmol/mL

1

5

150

100

3

2

5

50

200

1

5

1

200

200

0.5

6

0.5

200

200

0.25

7

0.25

200

200

0.125

8

0.125

200

200

0.0625

9

0.0625

200

200

0.03125

備注:實驗中每個標準管需50µL標準溶液。

4、在EP管中按下表步驟加樣:

試劑名稱(μL)

測定管

對照管

標準管

空白管

樣本

50

50

-

-

標準溶液

-

-

50

-

37℃水浴5min

-

-

試劑一

120

-

-

-

37℃水浴30min,沸水浴10min

-

-

試劑一

-

120

-

-

蒸餾水

-

-

120

170

工作液

150

150

150

150

     溫靜置10min8000g,室溫離心10min,吸取200μL上清,于700nm處測定吸光值,分別記為A測定A對照A標準A空白。分別計算 ΔA=A測定-A對照ΔA標準=A標準-A空白(標準曲線和空白管只需做 1-2 次,每個測定管需設(shè)置一個對照管)。

二、植酸酶活性的計算

1. 標準曲線的繪制

根據(jù)標準管的濃度(xμmol/mL)和吸光度ΔA標準(yΔA標準),建立標準曲線。根據(jù)標準曲線,將ΔAyΔA)代入公式計算樣本濃度(xμmol/mL)。

2. 植酸酶活性計算

1)按樣本蛋白質(zhì)濃度計算

單位定義:在37pH5.5環(huán)境下,mg組織蛋白每分鐘在反應(yīng)體系釋放1μmol無機磷為1個酶活力單位。

植酸酶活性(U/mg prot= x×V樣總÷Cpr×V樣總÷T= x÷Cpr÷30

2)按樣本質(zhì)量計算

單位定義:在37pH5.5環(huán)境下,g組織每分鐘在反應(yīng)體系釋放1μmol無機磷為1個酶活力單位。

植酸酶活性(U/g 質(zhì)量)= x×V樣總÷W÷T=x÷W÷30

3)按細菌/細胞數(shù)量計算

單位定義:在37pH5.5環(huán)境下,104個細胞每分鐘在反應(yīng)體系釋放1μmol無機磷為1個酶活力單位。

植酸酶活性(U/104cell=  x×V樣總÷N÷T= x÷N÷30

4)按照液體樣本體積計算

單位定義:在37pH5.5環(huán)境下,mL樣本每分鐘在反應(yīng)體系釋放1μmol無機磷為1個酶活力單位。

植酸酶活性(U/mL= x×V÷V÷T= x÷30

V樣:加入樣本體積,0.05mLV樣總:提取液體積,1mLCpr:樣本蛋白質(zhì)濃度,mg/mLW:樣本質(zhì)量,gT:反應(yīng)時間,30minN細胞數(shù)量以萬計

注意事項:

1. 為防止沸水浴10min過程中水分散失,建議使用螺旋管或用封口膜給EP管纏口。

2. 如果測定吸光值過低或接近空白,適當延長反應(yīng)時間或加大樣本量后,重新測定。如果A測定大于1.5或者ΔA超過檢測范圍,建議將樣本用蒸餾水進行適當稀釋后進行測定。注意同步修改計算公式。

3. 結(jié)果于40min內(nèi)測定完畢。

實驗實例:

0.15g菠菜種子(已發(fā)芽),按照測定步驟操作,測得計算A測定 = 0.692A對照 = 0.573?A= 0.119,將?A代入標曲公式y = 0.2991x + 0.0121,得出x= 0.357,按樣本質(zhì)量計算酶活得:

植酸酶活性(U/g 質(zhì)量)= 0.0794 U/g 質(zhì)量。

參考文獻:

[1] Senna R , Simonin V , Silva-Neto M A C , et al. Induction of acid phosphatase activity during germination of maize (Zea mays) seeds.[J]. Plant Physiology & Biochemistry, 2006, 44(7-9):467-473.

[2] Iqbal T H , Lewis K O , Cooper B T . Phytase activity in the human and rat small intestine[J]. Gut, 1994, 35(9):1233-1236.

[3] Azeke M A ,  Egielewa S J ,  Ihimire E . Effect of germination on the phytase activity, phytate and total phosphorus contents of rice (Oryza sativa), maize (Zea mays), millet (Panicum miliaceum), sorghum (Sorghum bicolor) and wheat (Triticum aestivum)[J]. Journal of Food Science&Technology, 2011.

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